<italic style="font-style: italic">Streptococcus anginosus</italic> mediates CD8<sup>+</sup> T cell dysfunction <italic style="font-style: italic">via</italic> upregulating PD-L1 in gastric cancer cells

PAN Huilin; JIANG Jiayi; WU Linyu; ZHENG Xipeng; HOU Yongying; XIANG Junyu; QIN Zhongyi; CHEN Dongfeng; ZHANG Qiaoqiao; LEI Zengjie; CHU Xiaoyuan; WANG Bin; WANG Lei; MA Qiang; WANG Tao

doi:10.16016/j.2097-0927.202601002

您当前的位置：

首页 >

文章列表页 >

Streptococcus anginosus mediates CD8⁺ T cell dysfunction via upregulating PD-L1 in gastric cancer cells

Basic Medicine | 更新时间：2026-03-30

- Streptococcus anginosus mediates CD8⁺ T cell dysfunction via upregulating PD-L1 in gastric cancer cells
- Journal of Army Medical University Vol. 48, Issue 6, Pages: 745-756(2026)
- 作者机构：
  
  1.陆军军医大学（第三军医大学）大坪医院，消化内科，消化系统肿瘤精准防治重庆市重点实验室，重庆
  2.陆军军医大学（第三军医大学）大坪医院，病理科，重庆
  3.金凤实验室，重庆
  4.南京大学医学院附属金陵医院（东部战区总医院）肿瘤科，江苏南京
- 作者简介：
  
  MA Qiang，E-mail：blmaq@sina.com
  WANG Tao，E-mail：t26983@tmmu.edu.cn
- 基金信息：
  
  the Natural Science Foundation of Chongqing(CSTB2024NSCQ-LZX0015;CSTB2023NSCQ-LZX0156)
- DOI：10.16016/j.2097-0927.202601002
  CLC： R735.2;R392.12;R730.51
- Received：02 January 2026，
  
  Revised：2026-01-26，
  
  Published：30 March 2026
- 稿件说明：
移动端阅览
潘惠琳，蒋佳艺，吴林育，等.咽峡炎链球菌通过上调胃癌细胞PD-L1表达介导CD8⁺ T细胞功能抑制［J］.陆军军医大学学报，2026，48（06）：745-756.DOI：10.16016/j.2097-0927.202601002.

PAN H L，JIANG J Y，WU L Y，et al.Streptococcus anginosus mediates CD8⁺ T cell dysfunction via upregulating PD-L1 in gastric cancer cells［J］.J Army Med Univ，2026，48（06）：745-756.DOI：10.16016/j.2097-0927.202601002.
潘惠琳，蒋佳艺，吴林育，等.咽峡炎链球菌通过上调胃癌细胞PD-L1表达介导CD8⁺ T细胞功能抑制［J］.陆军军医大学学报，2026，48（06）：745-756.DOI：10.16016/j.2097-0927.202601002. DOI：

PAN H L，JIANG J Y，WU L Y，et al.Streptococcus anginosus mediates CD8⁺ T cell dysfunction via upregulating PD-L1 in gastric cancer cells［J］.J Army Med Univ，2026，48（06）：745-756.DOI：10.16016/j.2097-0927.202601002. DOI：

摘要

目的

新近研究发现，咽峡炎链球菌（

Streptococcus anginosus

，

S. a

）可促进胃癌（gastric cancer，GC）发生，但其在胃癌进展中的作用，特别是对肿瘤免疫微环境（tumor immune microenvironment，TIME）的影响机制尚未阐明。本研究拟探讨

S. a

在进展期胃癌中的作用，并验证其是否通过诱导胃癌细胞上调程序性死亡配体1（programmed death-ligand 1，PD-L1）表达，抑制CD8

T细胞功能的科学假说。

方法

基于自产的转录组测序（RNA-seq）原始数据（

=98），构建

S.a

相对丰度（

S. a

score）的计算流程；另一方面，利用机器学习的方法构建特征基因模型，从公共队列的基因表达矩阵中推导

S.a

的丰度水平。基于上述方法，根据丰度中位数将胃癌患者分为

S. a

高丰度组（

S.a

high

）与

S. a

低丰度组（

S.a

low

）。结合单细胞转录组测序数据（

=23），分析两组患者肿瘤免疫微环境中细胞构成的差异。体外验证实验使用

S.a

处理人（NUGC-3）和鼠（TKM）胃癌细胞系8 h，通过定量PCR与Western blot检测PD-L1表达变化；并通过流式细胞术检测共培养体系中CD8

T细胞对

S.a

预处理胃癌细胞的杀伤功能变化。体内实验采用C57BL/6小鼠原位胃癌模型，实验组通过口服灌胃给予

S.a

菌液，对照组给予无菌培养基，持续干预6周（每组

=6），通过活体成像、肿瘤体积及胃重比较评估肿瘤负荷。

结果

胃癌组织中

S.a

的丰度显著高于正常胃黏膜（

=0.000 850），且高丰度与预后不良有关（

=1.49，95%

CI；

1.09~2.04，

=0.013 9）。通过单细胞转录组数据解析TIME，发现

S.a

含量不同的胃癌组织具有显著差异的TIME细胞构成，其中

S.a

丰度高的胃癌组织中CD8

T细胞数量显著增多（

0.000 1），但多呈耗竭状态（

0.000 1）。我们进一步发现胃癌细胞可能是影响CD8

T细胞功能状态的重要细胞群体，存在一群与

S.a

丰度（Spearman’s

rho

=0.288，

0.000 1）及耗竭CD8

T细胞（Spearman’s

rho

=0.522，

0.000 1）均显著正相关的胃癌细胞。在机制上，

S.a

处理可显著上调胃癌细胞PD-L1的表达（

0.000 1）。共培养实验证实，经

S.a

预处理的胃癌细胞能降低CD8

T细胞的杀伤功能（

=0.000 526）。体内实验结果显示，

S.a

灌胃组小鼠的肿瘤成像（

=0.030 6）、肿瘤体积（

=0.045 3）及胃重（

=0.030 6）显著高于对照组。

结论

胃癌中丰度增加的

S.a

在重塑肿瘤免疫微环境的同时，通过诱导胃癌细胞高表达PD-L1而介导CD8

T细胞产生耗竭表型、协助肿瘤免疫逃逸。

Abstract

Objective

Recent evidence shows that

Streptococcus anginosus

(

S.a

) promotes the development of gastric cancer (GC). However

its role in GC progression

particularly its impact on tumor immune microenvironment (TIME)

remains unclear. This study aims to investigate the role of

S. a

in advanced GC and test the hypothesis that

S. a

upregulates PD-L1 expression in GC cells

thereby inhibiting CD8

T cell function.

Methods

Based on in-house RNA sequencing (RNA-seq) raw data (

=98)

a computational pipeline was established to determine the relative abundance of

S.a

(

S.a

score). In parallel

a machine learning-based signature gene model was constructed to infer

S. a

abundance from gene expression matrices of public cohorts. Using these approaches

GC patients were stratified into

S.a

-high (

S.a

high

) and

S.a

-low (

S.a

low

) groups according to the median abundance. Single-cell RNA sequencing (scRNA-seq) data (

=23) were integrated to analyze differences in cellular composition within the TIME between the 2 groups. For

in vitro

validation

human (NUGC-3) and murine (TKM) GC cell lines were treated with

S.a

for 8 h

followed by quantification of PD-L1 expression

via

qPCR and Western blotting. Cytotoxic function of CD8

T cells against

S.a

-pretreated GC cells was evaluated by flow cytometry in co-culture systems. where

S.a

-pretreated cancer cells were incubated with CD8⁺ T cells

and cytotoxicity was measured by flow cytometry. For

in vivo

validation

a C57BL/6 mouse orthotopic GC model was established; the experimental group received

S.a

bacterial suspension

via

oral gavage

while the control group received sterile culture medium

with continuous intervention for 6 weeks (

=6). Tumor burden was evaluated by

in vivo

imaging

tumor volume

and stomach weight.

Results

The abundance of

S. a

was significantly higher in GC tissues than in normal gastric mucosa (

=0.000 850)

and high abundance was associated with poor prognosis (

=1.49

95%

: 1.09 to 2.04

=0.013 9). Analysis of the TIME using scRNA-seq data revealed distinct cellular compositions between GC tissues with varying

S.a

levels. Notably

S.a

high

C tissues exhibited a significant increase in CD8

T cell infiltration (

0.000 1)

yet these cells predominantly displayed an exhausted phenotype (

0.000 1). Further analysis identified a subset of GC cells whose abundance is correlated positively with both

S.a

levels (Spearman’s

rho

=0.288

0.000 1) and proportion of exhausted CD8⁺ T cells (Spearman’s

rho

=0.522

0.000 1)

suggesting their potential roles in modulating CD8⁺ T cell function. Mechanistically

S.a

treatment significantly upregulated PD-L1 expression in GC cells (

0.000 1). In co-culture assays

S.a

-pretreated cancer cells impaired the cytotoxic function of CD8⁺ T cells (

=0.000 526).

In vivo

results demonstrated that the mice in the

S. a

gavage group exhibited significantly higher tumor bioluminescence intensity (

=0.030 6)

larger tumor volume (

=0.045 3)

and increased stomach weight (

=0.030 6) compared to the control group.

Conclusion

Enriched

S.a

abundance not only reshapes the TIME of GC

but also mediates CD8

T cell exhaustion and facilitates tumor immune evasion by inducing high PD-L1 expression in GC cells.

关键词

Keywords

references

SUNDAR R ， NAKAYAMA I ， MARKAR S R ， et al . Gastric cancer ［J］. Lancet ， 2025 ， 405 （ 10494 ）： 2087 - 2102 . DOI： 10.1016/S0140-6736（25）00052-2 http://dx.doi.org/10.1016/S0140-6736（25）00052-2 .

FERREIRA R M ， PEREIRA-MARQUES J ， PINTO-RIBEIRO I ， et al . Gastric microbial community profiling reveals a dysbiotic cancer-associated microbiota ［J］. Gut ， 2018 ， 67 （ 2 ）： 226 - 236 . DOI： 10.1136/gutjnl-2017-314205 http://dx.doi.org/10.1136/gutjnl-2017-314205 .

DUAN Y T ， XU Y H ， DOU Y ， et al . Helicobacter pylori and gastric cancer： mechanisms and new perspectives ［J］. J Hematol Oncol ， 2025 ， 18 （ 1 ）： 10 . DOI： 10.1186/s13045-024-01654-2 http://dx.doi.org/10.1186/s13045-024-01654-2 .

SKUBLENY D ， PURICH K ， MCLEAN D R ， et al . The tumor immune microenvironment drives survival outcomes and therapeutic response in an integrated molecular analysis of gastric adenocarcinoma ［J］. Clin Cancer Res ， 2024 ， 30 （ 23 ）： 5385 - 5398 . DOI： 10.1158/1078-0432.CCR-23-3523 http://dx.doi.org/10.1158/1078-0432.CCR-23-3523 .

CHEN B N ， TANG H Z ， ZHENG X H ， et al . Spatial and functional dissection of cancer-associated fibroblasts-mediated immune modulation in H. pylori-associated gastric cancer ［J］. Mol Cancer ， 2025 ， 24 （ 1 ）： 282 . DOI： 10.1186/s12943-025-02490-9 http://dx.doi.org/10.1186/s12943-025-02490-9 .

FU K L ， CHEUNG A H K ， WONG C C ， et al . Streptococcus anginosus promotes gastric inflammation， atrophy， and tumorigenesis in mice ［J］. Cell ， 2024 ， 187 （ 4 ）： 882 - 896.e17 . DOI： 10.1016/j.cell.2024.01.004 http://dx.doi.org/10.1016/j.cell.2024.01.004 .

WEI X Y ， FENG H J ， ZHU Y Y ， et al . The immune microenvironment of pathogen-associated cancers and current clinical therapeutics ［J］. Mol Cancer ， 2025 ， 24 （ 1 ）： 232 . DOI： 10.1186/s12943-025-02448-x http://dx.doi.org/10.1186/s12943-025-02448-x .

XU Y ， WANG M C . The intratumoral microbiota in breast cancer： from basic research to clinical translation ［J］. Gut Microbes ， 2025 ， 17 （ 1 ）： 2560695 . DOI： 10.1080/19490976.2025.2560695 http://dx.doi.org/10.1080/19490976.2025.2560695 .

XU W T ， XU Q F ， LUO P ， et al . Gut-brain-microbiome axis in the regulation of cancer immune escape and immunotherapy in tumors ［J］. Research ， 2025 ， 8 ： 0885 . DOI： 10.34133/research.0885 http://dx.doi.org/10.34133/research.0885 .

The Cancer Genome Atlas Research Network . Comprehensive molecular characterization of gastric adenocarcinoma ［J］. Nature ， 2014 ， 513 （ 7517 ）： 202 - 209 . DOI： 10.1038/nature13480 http://dx.doi.org/10.1038/nature13480 .

CRISTESCU R ， LEE J ， NEBOZHYN M ， et al . Molecular analysis of gastric cancer identifies subtypes associated with distinct clinical outcomes ［J］. Nat Med ， 2015 ， 21 （ 5 ）： 449 - 456 . DOI： 10.1038/nm.3850 http://dx.doi.org/10.1038/nm.3850 .

CHEONG J H ， YANG H K ， KIM H ， et al . Predictive test for chemotherapy response in resectable gastric cancer： a multi-cohort， retrospective analysis ［J］. Lancet Oncol ， 2018 ， 19 （ 5 ）： 629 - 638 . DOI： 10.1016/S1470-2045（18）30108-6 http://dx.doi.org/10.1016/S1470-2045（18）30108-6 .

KIM J ， PARK C ， KIM K H ， et al . Single-cell analysis of gastric pre-cancerous and cancer lesions reveals cell lineage diversity and intratumoral heterogeneity ［J］. NPJ Precis Oncol ， 2022 ， 6 （ 1 ）： 9 . DOI： 10.1038/s41698-022-00251-1 http://dx.doi.org/10.1038/s41698-022-00251-1 .

KANG B X ， CAMPS J ， FAN B ， et al . Parallel single-cell and bulk transcriptome analyses reveal key features of the gastric tumor microenvironment ［J］. Genome Biol ， 2022 ， 23 （ 1 ）： 265 . DOI： 10.1186/s13059-022-02828-2 http://dx.doi.org/10.1186/s13059-022-02828-2 .

JURADO-RUEDA F ， ALONSO-GUIRADO L ， PEREA-CHAM-BLEE T E ， et al . Benchmarking of microbiome detection tools on RNA-seq synthetic databases according to diverse conditions ［J］. Bioinform Adv ， 2023 ， 3 （ 1 ）： vbad014 . DOI： 10.1093/bioadv/vbad014 http://dx.doi.org/10.1093/bioadv/vbad014 .

BATTAGLIA T W ， MIMPEN I L ， TRAETS J J H ， et al . A pan-cancer analysis of the microbiome in metastatic cancer ［J］. Cell ， 2024 ， 187 （ 9 ）： 2324 - 2335.e19 . DOI： 10.1016/j.cell.2024.03.021 http://dx.doi.org/10.1016/j.cell.2024.03.021 .

HOTHORN T ， BÜHLMANN P . Model-based boosting in high dimensions ［J］. Bioinformatics ， 2006 ， 22 （ 22 ）： 2828 - 2829 . DOI： 10.1093/bioinformatics/btl462 http://dx.doi.org/10.1093/bioinformatics/btl462 .

ZENG D Q ， YE Z L ， SHEN R F ， et al . IOBR： multi-omics immuno-oncology biological research to decode tumor microenvironment and signatures ［J］. Front Immunol ， 2021 ， 12 ： 687975 . DOI： 10.3389/fimmu.2021.687975 http://dx.doi.org/10.3389/fimmu.2021.687975 .

XIAO X ， ZHANG X ， WANG J ， et al . Proton pump inhibitors alter gut microbiota by promoting oral microbiota translocation： a prospective interventional study ［J］. Gut ， 2024 ， 73 （ 7 ）： 1098 - 1109 . DOI： 10.1136/gutjnl-2023-330883 http://dx.doi.org/10.1136/gutjnl-2023-330883 .

LIU X J ， BAO X H ， HU M J ， et al . Inhibition of PCSK9 potentiates immune checkpoint therapy for cancer ［J］. Nature ， 2020 ， 588 （ 7839 ）： 693 - 698 . DOI： 10.1038/s41586-020-2911-7 http://dx.doi.org/10.1038/s41586-020-2911-7 .

PASSARO A ， AL BAKIR M ， HAMILTON E G ， et al . Cancer biomarkers： Emerging trends and clinical implications for personalized treatment ［J］. Cell ， 2024 ， 187 （ 7 ）： 1617 - 1635 . DOI： 10.1016/j.cell.2024.02.041 http://dx.doi.org/10.1016/j.cell.2024.02.041 .

PENG S K ， LIN A Q ， JIANG A M ， et al . CTLs heterogeneity and plasticity： implications for cancer immunotherapy ［J］. Mol Cancer ， 2024 ， 23 （ 1 ）： 58 . DOI： 10.1186/s12943-024-01972-6 http://dx.doi.org/10.1186/s12943-024-01972-6 .

PHILIP M ， SCHIETINGER A . CD8 + T cell differentiation and dysfunction in cancer ［J］. Nat Rev Immunol ， 2022 ， 22 （ 4 ）： 209 - 223 . DOI： 10.1038/s41577-021-00574-3 http://dx.doi.org/10.1038/s41577-021-00574-3 .

ST PAUL M ， OHASHI P S . The roles of CD8 + T cell subsets in antitumor immunity ［J］. Trends Cell Biol ， 2020 ， 30 （ 9 ）： 695 - 704 . DOI： 10.1016/j.tcb.2020.06.003 http://dx.doi.org/10.1016/j.tcb.2020.06.003 .

GILES J R ， GLOBIG A M ， KAECH S M ， et al . CD8 + T cells in the cancer-immunity cycle ［J］. Immunity ， 2023 ， 56 （ 10 ）： 2231 - 2253 . DOI： 10.1016/j.immuni.2023.09.005 http://dx.doi.org/10.1016/j.immuni.2023.09.005 .

ZHENG L ， QIN S ， SI W ， et al . Pan-cancer single-cell landscape of tumor-infiltrating T cells ［J］. Science ， 2021 ， 374 （ 6574 ）： abe6474 . DOI： 10.1126/science.abe6474 http://dx.doi.org/10.1126/science.abe6474 .

GEBHARDT T ， PARK S L ， PARISH I A . Stem-like exhausted and memory CD8 + T cells in cancer ［J］. Nat Rev Cancer ， 2023 ， 23 （ 11 ）： 780 - 798 . DOI： 10.1038/s41568-023-00615-0 http://dx.doi.org/10.1038/s41568-023-00615-0 .

YI M ， ZHENG X L ， NIU M K ， et al . Combination strategies with PD-1/PD-L1 blockade： current advances and future directions ［J］. Mol Cancer ， 2022 ， 21 （ 1 ）： 28 . DOI： 10.1186/s12943-021-01489-2 http://dx.doi.org/10.1186/s12943-021-01489-2 .

PÉREZ-RUIZ E ， MELERO I ， KOPECKA J ， et al . Cancer immunotherapy resistance based on immune checkpoints inhibitors： Targets， biomarkers， and remedies ［J］. Drug Resist Updat ， 2020 ， 53 ： 100718 . DOI： 10.1016/j.drup.2020.100718 http://dx.doi.org/10.1016/j.drup.2020.100718 .

OUTH-GAUER S ， MORINI A ， TARTOUR E ， et al . The microenvironment of head and neck cancers： papillomavirus involvement and potential impact of immunomodulatory treatments ［J］. Head Neck Pathol ， 2020 ， 14 （ 2 ）： 330 - 340 . DOI： 10.1007/s12105-020-01147-x http://dx.doi.org/10.1007/s12105-020-01147-x .

KONG Y X ， ZHU L L ， SCHELL T D ， et al . T-cell immunoglobulin and ITIM domain （TIGIT） associates with CD8 + T-cell exhaustion and poor clinical outcome in AML patients ［J］. Clin Cancer Res ， 2016 ， 22 （ 12 ）： 3057 - 3066 . DOI： 10.1158/1078-0432.CCR-15-2626 http://dx.doi.org/10.1158/1078-0432.CCR-15-2626 .

CHAUVIN J M ， ZAROUR H M . TIGIT in cancer immunotherapy ［J］. J Immunother Cancer ， 2020 ， 8 （ 2 ）： e000957 . DOI： 10.1136/jitc-2020-000957 http://dx.doi.org/10.1136/jitc-2020-000957 .

HILL C N ， MAITA G ， CABROLIER C ， et al . Galectin-9 and Tim-3 in gastric cancer： a checkpoint axis driving T cell exhaustion and Treg-mediated immunosuppression independently of anti-PD-1 blockade ［J］. Front Immunol ， 2025 ， 16 ： 1600792 . DOI： 10.3389/fimmu.2025.1600792 http://dx.doi.org/10.3389/fimmu.2025.1600792 .

INDINI A ， MASSI D ， PIRRO M ， et al . Targeting inflamed and non-inflamed melanomas： biological background and clinical challenges ［J］. Semin Cancer Biol ， 2022 ， 86 （ Pt 2 ）： 477 - 490 . DOI： 10.1016/j.semcancer.2022.06.005 http://dx.doi.org/10.1016/j.semcancer.2022.06.005 .

COKER O O ， DAI Z W ， NIE Y Z ， et al . Mucosal microbiome dysbiosis in gastric carcinogenesis ［J］. Gut ， 2018 ， 67 （ 6 ）： 1024 - 1032 . DOI： 10.1136/gutjnl-2017-314281 http://dx.doi.org/10.1136/gutjnl-2017-314281 .

LIU X S ， SHAO L ， LIU X ， et al . Alterations of gastric mucosal microbiota across different stomach microhabitats in a cohort of 276 patients with gastric cancer ［J］. EBioMedicine ， 2019 ， 40 ： 336 - 348 . DOI： 10.1016/j.ebiom. 2018.12.034 http://dx.doi.org/10.1016/j.ebiom.2018.12.034 .

ZHOU C B ， PAN S Y ， JIN P ， et al . Fecal signatures of Streptococcus anginosus and Streptococcus constellatus for noninvasive screening and early warning of gastric cancer ［J］. Gastroenterology ， 2022 ， 162 （ 7 ）： 1933 - 1947.e18 . DOI： 10.1053/j.gastro.2022.02.015 http://dx.doi.org/10.1053/j.gastro.2022.02.015 .

KRIEG A M . New insights into the role of IFN-α/β and TLR7/8/9 in cancer immunotherapy and systemic autoimmunity ［J］. J Immunother Cancer ， 2025 ， 13 （ 9 ）： e012165 . DOI： 10.1136/jitc-2025-012165 http://dx.doi.org/10.1136/jitc-2025-012165 .

BORDEN E C ， SEN G C ， UZE G ， et al . Interferons at age 50： past， current and future impact on biomedicine ［J］. Nat Rev Drug Discov ， 2007 ， 6 （ 12 ）： 975 - 990 . DOI： 10.1038/nrd2422 http://dx.doi.org/10.1038/nrd2422 .

ELETTO D ， MENTUCCI F ， VOLI A ， et al . Helicobacter pylori pathogen-associated molecular patterns： friends or foes？［J］. Int J Mol Sci ， 2022 ， 23 （ 7 ）： 3531 . DOI： 10.3390/ijms23073531 http://dx.doi.org/10.3390/ijms23073531 .

TEGTMEYER N ， NEDDERMANN M ， LIND J ， et al . Toll-like receptor 5 activation by the CagY repeat domains of Helicobacter pylori ［J］. Cell Rep ， 2020 ， 32 （ 11 ）： 108159 . DOI： 10.1016/j.celrep.2020.108159 http://dx.doi.org/10.1016/j.celrep.2020.108159 .

BLASER N ， BACKERT S ， PACHATHUNDIKANDI S K . Immune cell signaling by Helicobacter pylori ： impact on gastric pathology ［J］. Adv Exp Med Biol ， 2019 ， 1149 ： 77 - 106 . DOI： 10.1007/5584_2019_360 http://dx.doi.org/10.1007/5584_2019_360 .

WANG J F ， DENG R L ， CHEN S ， et al . Helicobacter pylori CagA promotes immune evasion of gastric cancer by upregulating PD-L1 level in exosomes ［J］. iScience ， 2023 ， 26 （ 12 ）： 108414 . DOI： 10.1016/j.isci.2023.108414 http://dx.doi.org/10.1016/j.isci.2023.108414 .

KRAEHENBUEHL L ， WENG C H ， EGHBALI S ， et al . Enhancing immunotherapy in cancer by targeting emerging immunomodulatory pathways ［J］. Nat Rev Clin Oncol ， 2022 ， 19 （ 1 ）： 37 - 50 . DOI： 10.1038/s41571-021-00552-7 http://dx.doi.org/10.1038/s41571-021-00552-7 .

王斌，王涛 . 胃癌的科学预防、早期诊断与精准治疗［J］. 陆军军医大学学报， 2025 ， 47 （ 5 ）： 385 - 395 . DOI： 10.16016/j.2097-0927.202501072 http://dx.doi.org/10.16016/j.2097-0927.202501072 .

WANG B ， WANG T . Effective prevention， early diagnosis and precise treatment of gastric cancer ［J］. J Army Med Univ ， 2025 ， 47 （ 5 ）： 385 - 395 . DOI： 10.16016/j.2097-0927.202501072 http://dx.doi.org/10.16016/j.2097-0927.202501072 .

WU K C . Research highlights of clinical oncology early 2022 ［J］. Holist Integr Oncol ， 2022 ， 1 （ 1 ）： 6 . DOI： 10.1007/s44178-022-00006-9 http://dx.doi.org/10.1007/s44178-022-00006-9 .

Views

下载量

CSCD

Alert me when the article has been cited

提交

Tools

Publicity Resources

Immunosuppressive microenvironment of TGIF1-overexpressing gastric cancers and its clinical significance

Functionally impaired CD103⁺CD39⁺CD8⁺ T cell subsets with immune-suppressive properties infiltrating gastric cancer tissues promote tumor progression

Novel molecular glue LTL-04-061 targets OTULIN for degradation via the CRBN-mediated ubiquitin-proteasome pathway and significantly suppresses gastric cancer cell proliferation

Spatial profiling of gastric cancer reveals distinct transcriptional meta-programs driving immunosuppressive microenvironment

Oxaliplatin suppresses gastric cancer by inducing cuproptosis

Related Author

TONG Huyun

CHEN Xu

ZHANG Wenjie

WANG Tao

LI Xianfeng

QIU Qiu

WANG Bin

HUANG Mengqiu

Related Institution

Department of Gastroenterology， Chongqing Hechuan District People’s Hospital

School of Medicine， Chongqing University

Chongqing Key Laboratory of Precision Prevention and Treatment for Digestive System Tumors， Department of Gastroenterology， Army Medical Center of PLA/Daping Hospital of Third Military Medical University

Department of Microbiology and Biochemical Pharmacy， Faculty of Pharmacy and Laboratory Medicine， Army Medical University （Third Military Medical University）

Department of General Surgery， Second Affiliated Hospital， Army Medical University （Third Military Medical University）

⁰

Streptococcus anginosus mediates CD8+ T cell dysfunction via upregulating PD-L1 in gastric cancer cells

DOI：10.16016/j.2097-0927.202601002

摘要

Abstract

关键词

Keywords

references

Streptococcus anginosus mediates CD8⁺ T cell dysfunction via upregulating PD-L1 in gastric cancer cells